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    麻痹性貝類毒素試劑盒

    麻痹性貝類毒素試劑盒

    簡要描述:麻痹性貝類毒素試劑盒,采用抗體包被的方式進行酶聯(lián)檢測,反應時間為30min,即可準確判定樣本中麻痹性貝類毒素含量

    產品型號: 000-1344

    所屬分類:麻痹性貝類毒素試劑盒

    更新時間:2024-12-09

    廠商性質:生產廠家

    詳情介紹

    麻痹性貝類毒素酶聯(lián)試劑盒試劑盒基于競爭性ELISA酶聯(lián)免疫的方法,麻痹性貝類毒素的抗體包被于酶標孔內,樣品與麻痹性貝類毒素-酶標記物加入到微孔內,若樣品中有麻痹性貝類毒素殘留,它將與貝類毒素-酶標記物共同競爭酶標板包被的抗體。加入TMB底物后,顏色發(fā)生變化,經(jīng)酶標儀檢測讀數(shù)后確定樣品中貝類毒素的含量。顏色的深淺與毒素的殘留量成反比

    警告

    實驗前請閱讀以下文字,以保證獲得實驗效果。

    ü 標準品中含有腹瀉性貝類毒素,請小心使用。

    ü 不要使用過期的試劑盒。

    ü 不同批次的試劑盒不要混用,抗體和微孔板具有盒與批次的特異性。

    ü 盡量保持室溫(25±2.5),避免在通風口操作防止溫度過低,過熱和/或者蒸發(fā)。同樣的,不要在陽光直射下實驗,防止過熱及蒸發(fā)。在孵育期間,如果工作臺溫度過低,應該鋪墊若干紙巾或者其他物料。

    ü 加入樣品或者試劑到空的微孔板時,吸嘴靠于微孔接近底部,并保持接觸。

    ü 孵育時間的計算越規(guī)范越好,保持添加標準品的一致性,先添加標準品后添加樣品。

    ü 從低濃度到高濃度地添加標準品,降低影響標準品曲線質量的風險。

    ü 將微孔板置于放有干燥劑的密封袋中,冷藏保存。

    酶聯(lián)免疫反應測試步驟

    以下為計算份量的表格,用戶可根據(jù)自己的需要來確定需要配置多少試劑。

    組分

    每孔所需量

    24個反應所需量

    貝類毒素酶標物

    50uL

    1.2mL

    工作洗液

    2.0ml

    48ml

    終止液

    50mL

    1.2ml

    TMB底物

    100mL

    2.4ml

     

     

    1) 加入50mL標準品或樣品在所設定的孔中;

    2) 每孔加入50mL 貝類毒素酶標物后,輕輕混勻20秒;

    3) 室溫(25±2.5)℃下避光孵育40分鐘;

    4) 每次加入1×洗液250mL,洗板3次,最后一次洗板后,倒置酶標板于干燥紙巾上清除多余水分;

    5) 加入100mL TMB底物,輕輕晃動20秒以便搖勻,避光條件下室溫(25±2.5)孵育12分鐘;

    6) 加入50mL終止液終止反應;

    7) 酶標儀450nm讀數(shù)。

    4.結果計算

    (1) 用平均相對吸光值建立標準曲線(以相對吸光值為縱坐標,濃度為橫坐標)

    相對吸光度值 (%) = (標準或樣品吸光度值/零標準吸光度值) ´ 100

    (2) 0標準品點OD在1.2-1.5之間,IC 50 在0.6-1.5ng/ml 采用四參數(shù)擬合曲線進行含量的統(tǒng)計



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